Основні напрямки наукової діяльності
  • молекулярно-генетичні, клітинні, системні і міжсистемні основи патогенезу соціально значущих моно- і мультифакторіальних захворювань;
  • розробка нових засобів, технологій і способів діагностики, лікування і профілактики інфекційних і неінфекційних захворювань, хвороб змішаного етіопатогенезу;
  • кількісна та функціональна оцінка популяцій клітин периферичної крові (імунофенотипування) для характеристики імунологічних аспектів патогенезу різних захворювань;
  • вивчення регуляторних механізмів функціонування клітин імунної системи;
  • вивчення особливостей редокс-стану клітин під дією різноманітних факторів та при основних соціально значущих захворюваннях людини;
  • вивчення сигнальних шляхів різних видів клітинної смерті (апоптоз, некроз, некроптоз, піроптоз, аутофагія, нетоз тощо) та особливостей клітинної смерті при інфекційних та неінфекційних захворюваннях;
  • дослідження ефективності та безпеки використання наночастинок різної природи в якості терапевтичних агентів;
  • визначення механізмів токсичного впливу харчових добавок та інших ксенобіотиків на клітини та організм у цілому;
  • дослідження цитологічних та біохімічних механізмів стресу;
  • визначення молекулярних механізмів міжклітинних взаємодій в нормі та при патології;
  • розробка інноваційних засобів корекції порушень обміну речовин;
  • розробка та впровадження теоретичних та методологічних основ формування моделей за вивченням типових патологічних процесів.
Основний прилад

Основний прилад – проточний цитометр BD FACSCanto™ II (Бектон Дікінсон,США).

Основним завданням проточної цитометрії є отримання інформації про популяції клітин шляхом вимірювання їх оптичних характеристик, застосовуючи, як правило, флуоресцентні барвники. Цитометрія дозволяє виміряти фізико-хімічні властивості окремих клітин.

Проточна цитометрія дозволяє проводити:

  • імунофенотипування (CD маркери);
  • визначення вмісту поверхневих та внутрішньоклітинних антигенів (ферментів, рецепторів, цитокінів, модифікованих білків тощо);
  • аналіз редокс-стан клітин;
  • оцінку стану мембран клітин;
  • оцінку життєздатності та різновидів клітинної смерті.
Основні методики, що використовуються у науково-дослідній роботі
  • визначення інтенсивності генерації активних форм кисню (АФК) клітинами за допомогою зонду H2DCFDA;
  • оцінка інтенсивності процесів ериптозу шляхом фарбування Annexin V-FITC;
  • визначення життєздатності та видів клітинної смерті;
  • визначення інтенсивності апоптозу клітин шляхом детекції вмісту активної каспази-3;
  • визначення вмісту антиапоптотичного білка bcl-2 у клітинах;
  • оцінка трансмембранного потенціалу мітохондрій за допомогою зонда JC-1;
  • дослідження інтенсивності апоптозу та некрозу за допомогою комбінованого фарбування Annexin V-FITC та 7-аміноактиноміцином D;
  • оцінка інтенсивності процесів аутофагії;
  • дослідження внутрішньоклітинного вмісту йонів кальцію з використанням зонда FLUO4-AM.